K. Knoops

Al sinds zijn studie biologie aan de Rijksuniversiteit Groningen specialiseerde Kèvin zich zowel in licht- als in elektronenmicroscopie. Daarna voltooide hij zijn proefschrift ("Nidovirus replicatiestructuren; Hijacking-membranen ter ondersteuning van virale RNA-synthese") in het Leids Universitair Medisch Centrum (LUMC), waarin de replicatieorganellen van Nidoviruses werden bestudeerd met behulp van geavanceerde cellulaire beeldvormingstechnieken. Gesteund door een langdurige EMBO-fellowship, verhuisde Kèvin in 2010 naar de EMBL in Grenoble om de structuur van translerende ribosomen met elektronenmicroscopie te bestuderen. In 2012 verhuisde Kèvin terug naar Groningen en ontving zowel de Marie Curie Intra-European Fellowship als ook de VENI van NWO om 5 jaar de biogenese en structuur van gistperoxisomen te bestuderen. In 2017 verhuisde Kèvin uiteindelijk naar het Microscopy CORE-lab aan de Universiteit van Maastricht als microscopie-specialist, waar hij momenteel verantwoordelijk is voor de sectie Licht Microscopie.

Expertises

Microscopy skills
 In vivo (confocal) fluorescence microscopy
 Immune-fluorescence microscopy
 Correlative light- and electron microscopy (CLEM)
 AiryScan, spinning disc and multiphoton microscopy
 Spectral imaging and linear unmixing
 Stimulated emission depletion microscopy (STED)
 High-throughput and –content image processing
 Intensity- and object-based co-localization analysis
 Chemical and cryo-fixation of cells, isolated organelles and protein complexes
 Low-dose imaging
 Freeze-substitution
 Ultra-thin (serial) sectioning
 Immunogold labeling
 Dual-axis electron tomography, reconstruction and modelling
 Electron spectroscopy imaging
 Single-particle EM analysis
 Sub-tomogram averaging
Molecular cell biology skills
 Culturing of bacteria, yeast, mammalian cells and viruses
 Genetic engineering of plasmid and genomic DNA
 Protein and DNA characterization by standard biochemistry methods
 Licensed to work with radionuclides (level 5B) and GMOs, viruses and bacteria at ML-2
 Cell lysate fractionation and gradient floatation
 Protein expression, isolation and purification